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卫生毒理学-实验指导:实验一 经口急性毒性试验

卫生毒理学:实验指导 实验一 经口急性毒性试验:◎<(一)目的> ◎<(二)原理&医学三基gt;◎<(三)内容>◎<(四)材料和试剂>◎<(五)操作步骤>◎<(六)结果评定>◎<(七)实验报告>※<(一)目的>化学毒物经口急性毒性试验是研究化学物毒性效应的基本试验。奉实习的目的是学习急性毒性试验的实验设计原则,学会经口灌胃技术、随机分组方法,掌握主要的LD50计算方法和急性毒性分级标准。返回顶部※<(二)原理>选择健康的实验动物,根据体重按随机
<(一)目的>

<(二)原理&医学三基gt;

<(三)内容>

<(四)材料和试剂>

<(五)操作步骤>

<(六)结果评定>

<(七)实验报告>
※<(一)目的>

 化学毒物经口急性毒性试验是研究化学物毒性效应的基本试验。奉实习的目的是学习急性毒性试验的实验设计原则,学会经口灌胃技术、随机分组方法,掌握主要的LD50计算方法和急性毒性分级标准。

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※<(二)原理>

 选择健康的实验动物,根据体重按随机分组的方法,依据LD50计算的设计原则将动物分成数个染毒组。一次或24h内多次给予受试物后,了解动物所产生的急性毒性反应及其严重程度,中毒死亡的特征以及可能的死亡原因,观察受试物毒性反应与剂量的关系,求出半数致死剂量(LD50),并根据LD50值将受试物进行急性毒性分级。

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※<(三)内容>

1.健康小鼠或大鼠的选择,性别的辨认。

2.称重、编号和随机分组方法。

3.受试化学物溶液的配制。

4.小鼠和大鼠经口灌胃操作技术.

5.毒性体征的观察、LD50计算和毒性分级

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※<(四)材料和试剂>

 1.实验动物  健康成年小鼠或大鼠若干只。

 2.器材  灌胃针(大鼠、小鼠适用)、注射器(0.25,1.2,5m1)、吸管(0.1,0.2,0.5,1,2,10ml)、容量瓶(10,25,50ml)、烧杯(10,25,50ml)、滴管、电子天平(感应量1/10000g)、动物体重秤、外科剪刀、镊子。

 3.试剂  受试物(由指导教师自定),苦味醒酒精饱和液,o.5%品红溶液或其他染色剂.

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※<(五)操作步骤>
 

1.健康动物的选择。

2.性别辨认。

3.动物称重、编号和分组;

  (1)称重;称量大、小鼠体重的秤,其感应量需在0.1g以下,并经过校正。称量时注意轻抓轻放动物,避免激惹,等动物安静后记录体重读数,以g表示。

  (www.med126.com/wsj/2)编号:以染色法编号。用苦味醒酒精饱和液为染料。以黄色为个位数号码,红色为十位数号码。一股以头部为1号,按顺时针依次右前肢为2号,右腰为2号,右后肢为4号,尾根部为5号,右后肢为s号,左腰为7号,左前肢为8号,后背为9号,10号为在头部染红色标记,11号在右前肢染红色和黄色标记各一,依次类推。

  (3)随机分组。

  4.剂量设置  由指导教师根据受试物类别,选择LD50计算方法设计剂量组。

  5.受试物的配制

  (1)量取受试物:固体化学物采用称量法,液体化学物可用称量法或吸量法

  1)称量法:将受试物放入已知重量的容器内称重。加溶剂溶解或稀释,倾入刻度容器(如容量瓶)内,混匀,再加溶剂至刻度。算出浓度(rog/mi)备用。

  2)吸量法:依设计剂量计算出应吸取液态受试物的容积,加入容量瓶中,用溶剂加至

刻度。计算公式为:

X=A*V/d*1000

式中;x:应吸取受试物的容积(mD;

A:设计要求的受试物浓度(mg/ml:

V:容量瓶容积(m1);

d;受试化学物比重。

(2)受试物的稀释

  1)等浓度稀释法:将受试化学物配成一种浓度,此时各剂量组的实验动物将给予不同体积的受试物。例如受试物配成1000mg/lOml的溶液,五个剂量组的剂量分别为100、200、400、800、1600mg/kg,则各剂量组动物将依次给予1.0mi/kg、2.Omi/kg直至最高剂量组的16mi/kg。

  2)等容量稀释法:按照事先设计的剂量分别稀释配制为几种不同浓度的受试物溶液,各个剂量组的动物均给予相同单位体重体积的受试化学物。如上例的情况,将受试物别配成l00mg/10ml、200mg/l0ml、400mg/10ml、800mg/10ml、1600mg/10ml 5个浓度,溶液,各剂量组动物给予受试物的体积均为l0ml/kg。

  6、灌胃操作  小鼠、大鼠及豚鼠灌冒法:采用专用小鼠和大鼠灌胃针,也可自制。将头的16号注射针(适用于小鼠)或20~24号腰穿针(适用于大鼠、豚鼠)(注意事先可用锡在针尖周围焊一圆头,使其不易损伤动物的消化遭)安装在适当容积的注射器上,吸所需的受试物溶液,左手抓住动物双耳后至背部的皮肤(小鼠仅抓住耳后、颈部的皮肤,无名指、小手指和大鱼际肌将其尾根部压紧),将动物固定成垂直体位,腹部面向操作。注意使动物的上消化道固定成一直线。右手持注射器,将针头由动物口腔侧插入,避牙齿,沿咽后壁缓缓滑人食管。若遇阻力,可轻轻上下滑动探索,一旦感觉阻力消失,即深人至胃部。如遇动物挣扎,应停止进针或将针拔出,千万不能强行插入,以免穿破食,甚至误入气管,导致动物立即死亡。

 一般进针深度小鼠2.5~4cm,大鼠或豚鼠4~6cm。为了验明是否已正确地插入胃部,可轻轻回抽注射器,如无气泡抽出,表明已插入胃中;如有大量气泡,则提示误插气管,应抽出重插。随后将受试物溶液注入。灌胃容量小鼠通常为o.2~1ml,大鼠1~4ml,豚鼠l~5ml。

7.中毒体征和动物死亡情况观察  染毒后注意观察毒性体征和死亡情况。高剂量组动物的死亡常很快发生,染毒后应即刻密切观察。观察和记录中毒体征及出现的时间、死亡数量和时间及死亡前的特征。根据观察情况分析中毒特点和毒作用靶器官.

LD50计算:根据受试物的种类由指导教师事先确定采用何种方法(改进寇氏法、霍恩法等)进行计算,并在试验前设计剂量分组和每组动物数。选择适宜的方法求出LD50及95%的可信限范围.如毒性反应存在性别差异,应分别求出不同性别动物的LD50值。

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※<(六)结果评定>

 

 根据实验动物中毒体征、死亡时间和特征、LD50,按受试物种类急性毒性分级标准进行评定,判断该受试物的毒性大小及毒性特征。

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※<(七)实验报告>

实验报告应包括以下内容;

1.实验动物的种属、晶系、性别及来源。实验前动物禁食和健康状况。

2.实验动物体重和随机分组情况.

3.受试物的名称、来源、纯度、性状等情况。

4.受试物的配制和溶媒。

5.详细描述实验观察的中毒表现和死亡情况等。

6.LD50的计算方法和结果。

  7.受试物的毒性分级、分级依据和结果评价。

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